制備原代組織樣品的單細胞懸浮液，可應用全自動溫和組織處理系統，不但可以有效的防止細胞的過度損耗，還能使標記靶細胞達到較大值，優化細胞的分選；收集組織細胞標本，還可制成細胞懸液以供下游分離。
通常細胞的培養會被分為懸浮培養和貼壁培養兩種，又因為細胞的增殖有可能會形成不同大小的細胞塊狀或片狀結構。若一塊中有兩個或更多的細胞粘連在一起或細胞碎片過多，都會影響FCM的結果，從而導致實驗的失敗。因此，合格的培養單細胞懸液制備是非常重要的，進而就應用到了全自動溫和組織處理器。
培養樣品單細胞懸液分離的制備方案
1、應用百分之0.04的乙二胺四乙酸二鈉鹽或是百分之0.29的胰蛋白酶進行消化3~7分鐘，時間主要是取決于室溫的狀況，直到光鏡下壁的細胞間出現篩狀的間隙，然后放棄消化液，加入PBS液體。
2、使用一根吸管將其細胞從瓶壁中輕輕吹出，然后移入離心管內。
3、進行低速的短期離心，即800~1000r/min，5分鐘即可。
4、棄上清，加pH7.4的PBS溶液，短時低速離心，重復進行2~3次，去除細胞懸液中的細胞碎片。
5、加入少量的PBS液體，輕吹均勻沉淀池。增加固定液或低溫保存，等待下次應用。
因此在做細胞培養制備時，還需全自動溫和組織處理系統的應用，可更好更完善的分離細胞懸浮液，獲得自己所需的制備樣品。
